小鼠骨髓来源树突状细胞培养法-Inaba 法(改良)

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作者:PeproTech 发布日期:2015-12-21 09:00

【背景】
1. Inaba 法获得的 BMDC 数目为 5-7 x 106 个/小鼠;

2. Inaba 原法操作比较复杂,需要将骨髓中的淋巴细胞等用抗体+补体法预先去除,后来的改良法均省却了这个步骤,其实 Inaba 后来自己也说这个步骤虽然可提高BMDC 的纯度,但不会对 BMDC 的生成产生影响,可做可不做;

3. Inaba 原法仅用 GM-CSF 来诱导 BMDC 的产生,虽然得到的 BMDC 在混合淋巴细胞反应中有较强的刺激能力,但 DC 的成熟度不及 GM+IL-4 的联合诱导,所以后来的改良法中多用 GM+IL-4 联合诱导。
【培养步骤】1.小鼠骨髓细胞的获得
1.1小鼠(6 - 10 周龄)颈椎脱臼法处死,手术取出所有股骨(femurs)和胫骨(tibias),并剪刀和镊子将骨周围的肌肉组织尽量去除干净;注:不要损伤到骨。

1.2将骨移至超净台内,并用盛有 70%酒精的无菌培养皿浸泡 2-5min,以消毒灭菌,然后用无菌的 PBS 洗 2 次;

1.3将骨移入另一个盛有 PBS 的新培养皿中,用剪刀剪去骨两端,再用注射器抽取 PBS,针头分别从骨两端插入骨髓腔,反复冲洗出骨髓至培养皿中,直至骨完全变白;

1.4收集骨髓悬液,用 200 目尼龙网滤去小碎片和肌肉组织;

1.5滤过液 1200 rpm 离心 5min,弃上清;

1.6加入 2 ml 氯化铵红细胞裂解液(1x),重悬细胞,室温孵育 3-5min,最长 10min;
氯化铵红细胞裂解液的配制:
(a)先配制10x的贮存液,配法如下:

称取82.9g NH4Cl,10.0gKHCO3和0.37g Na2EDTA,溶于1L的蒸馏水中,0.22?m滤膜过滤除菌,4oC储存6个月;

【注】可根据需要配制适量的10x贮存液,其中各组分需成比例增减。

(b)临用前,将10x贮存液用无菌蒸馏水1 : 9稀释成1x工作液即可。

【注】因氯化铵红细胞裂解液对骨髓细胞有一定的伤害作用,所以要尽量缩短溶血时间。

1.7加入 10 ml PBS 中和裂解液的作用,然后 1200 rpm 离心 5min,弃上清;

1.8PBS 洗 1 次,然后用含 10% FBS 的 RPMI 1640 培养液重悬细胞,至此已获得小鼠骨髓细胞。
2.BMDC 的诱导分化
2.1步骤 1 中获得的小鼠骨髓细胞计数后用含 10% FBS 的 RPMI 1640 完全培养液调整细胞浓度为 0.5-1 x 106/ml;

2.2铺至 24 孔培养板内,每孔 1ml 细胞,同时加入重组小鼠 GM-CSF (20ng/ml)和 IL-4 (10ng/ml),37℃,5% CO2 培养箱培养,此为培养的第 0 天;

【注】

(1) 一般一只小鼠大约可收获 4-5 x 107 个骨髓细胞,所以可以铺至少 40-50个 24 孔板板孔。

(2) GM-CSF 和 IL-4 的使用浓度区间分别为 20-50ng/ml 和 10-40ng/ml。

2.3每 2 天轻轻摇晃培养板,然后 3/4 体积更换新鲜培养液,并补足细胞因子。

【注】

(1)此步骤的目的是去除粒细胞和淋巴细胞,因粒细胞和淋巴细胞为悬浮生长;

(2) Inaba 认为培养的前 4 天,大部分 DC 贴壁仍较牢,所以此法不会大量损失 DC;

(3) 若发现损失的 DC 细胞过多,可仅在培养的第 2 天用此法换液;

(4) 在培养的第 4 天,可以看到聚团生长的 DC 贴附于板底,第 6 天则可观察到很多 DC 成集落生长。

2.4在第 5 天和第 8 天之间,轻柔吹打培养液,收集悬浮细胞及巯松贴壁生长的细胞;

【注】

(1) 最佳收集时间是培养的第 6 天;

(2) 此时的细胞已经是 BMDC,但成熟度不高,所以需要后续的再铺板(subculture)步骤使其更成熟;

(3) 吸出培养液(含 DC 细胞)的 24 孔培养板需补充新鲜的含重组小鼠GM-CSF (20 ng/ml)和 IL-4 (10ng/ml)的 RPMI 完全培养液,继续培养,以便后面能够再次收集 BMDC。

2.5 1200 rpm 离心 5min,弃上清;

2.6 用含 10% FBS 的 RPMI 1640 完全培养液重悬细胞并计数,然后调整细胞浓度至 1 x 106/ml,并加入重组小鼠 GM-CSF (20 ng/ml)和 IL-4 (10ng/ml);

2.7 细胞铺板至 100 mm 培养皿(每皿最多 10ml)或 6 孔培养板(2m/孔)。

2.8 37℃,5% CO2 培养箱继续培养 1-2 天;

2.9收集悬浮细胞,即为较成熟的 BMDC。

【注】

(1)第 2.5-2.8 步为再铺板(subculture)步骤,目的是使第 2.4 步获得的 BMDC更加成熟。

(2)再铺板后的 3h 内可见许多棘状贴壁细胞从 DC 簇中迁移出来,而培养1 天后会发现这些贴壁细胞从培养板底脱离,而且可以看见在培养液中漂浮着许多典型的 DC。
3、BMDC 的完全成熟
【注】步骤 2 中获得的 BMDC 并非完全成熟的 DC,若想得到完成成熟的 DC,还需 LPS,CD40L 或 TNF-a 等的诱导。

3.1步骤 2.4 或 2.9 中获得的 BMDC 以 1200rpm 离心 5min,弃上清;

3.2用含重组小鼠 GM-CSF (20 ng/ml)和 IL-4 (10ng/ml)的 RPMI 完全培养液重悬沉淀,计数后调整细胞浓度为 1 x 106/ml;

3.3加入 24 孔培养板中,并加入成熟诱导剂,如 TNF-? (250U/ml),LPS (1?g/ml)、或 CD40L(1?g/ml)等;

3.4 37℃,5% CO2 培养箱培养 2 天;

3.5收集悬浮细胞及疏松贴壁生长的细胞即为成熟树突状细胞